本文主要是介绍gromacs学习及使用(2)，希望对大家解决编程问题提供一定的参考价值，需要的开发者们随着小编来一起学习吧！
命令解释参考GROMACS基本教程
整个流程参考分子动力学模拟Gromacs一般使用步骤（空蛋白）
从gromacs 5.0版本开始，所有的工具都是“gmx”的子模块。可以通过下面的命令获得任何一个模块的帮助信息：
gmx help (module) 或者 gmx (module) -h
#!/bin/bash
module load gromacs/gromacs-2021.5-gcc-9.2.0-cuda11.1
for i in *.pdb;dopdbid=${i:0:7}echo $pdbidprintf "8"|gmx pdb2gmx -f $i -o ${pdbid}_processed.gro -water spc -ignhgmx editconf -f ${pdbid}_processed.gro -o ${pdbid}_newbox.gro -bt dodecahedron -d 1.0gmx solvate -cp ${pdbid}_newbox.gro -cs spc216.gro -p topol.top -o ${pdbid}_solvate.grogmx grompp -f em.mdp -c ${pdbid}_solvate.gro -p topol.top -o next.tpr -maxwarn 1printf "13" | gmx genion -s next.tpr -o ${pdbid}_solv_ions.gro -p topol.top -pname NA -nname CL -neutralgmx grompp -f em.mdp -c ${pdbid}_solv_ions.gro -p topol.top -o em.tprgmx mdrun -v -deffnm emgmx editconf -f em.gro -o em.pdbdone1.用pdb2gmx 处理 pdb 文件
gmx pdb2gmx -f $i -o ${pdbid}_processed.gro -water spc -ignh
(1)pdb2gmx此命令将pdb文件转换成gromacs文件并产生拓扑文件。
(2)-ignh因为本pdb文件是由 NMR产生的，含有氢原子，因此用-ignh选项忽略文件中的氢原子。
(2)注意-ignh选项, 它表明程序会首先移除初始文件中的氢原子, 然后再根据相应力场的说明进行重建。???
(3)-f读入pdb文件
(4)-ff可指定力场（G43a1是Gromos96力场，一个通用原子力场）(没用过)
(5)-o指定一个新产生的pdb文件（也可以是其它多种类型文件）的文件名
(6)-p指定新产生的拓扑文件名。拓扑文件包含了所有力场参数（基于一开始选择的力场），因此非常重要(也没用过)
(7)-water来指定水模型研究表明SPC/E 水模型在水盒子模拟中表现最好。用SPC/E 水模型研究长程静电相互作用较好。
(8)注：对于下面将要用到的任何命令，都可以使用“-h”查看该命令的使用方法，比如，对于命令pdb2gmx 可以使用： pdb2gmx –h
补充： pdb2gmx的目的是生成以下三个文件：
(1)分子的拓扑文件；(2)位置限定文件；(3)预处理的结构文件。
(4)拓扑文件（默认为topol.top）包含了模拟中定义一个分子的所有必须信息，包括非键相互作用（nonbonded，原子类型和电荷）和成键参数（bonded, 键、角、二面角）。后面生成相应文件后再详细查看。
(5)-ter：对N-端和C-端的电荷进行交互分配
(5)使用-ter选项后GROMACS会提示分子的末端变化, 合适的选择应该能够正确地表示体系。???
(6)-inter：对Glu、Asp、Lys、Arg和His的电荷进行交互分配；选择那(哪)些Cys参与二硫键
(7)xxx_processsed.gro是GROMACS格式的结构文件，包含了力场文件中包含的所有原子（蛋白中氨基酸的H原子已经补全）。
(8)topol.top文件是系统拓扑文件（接下来会详细介绍）。
(9)posre.itp包含了限制重原子位置的信息（后面会详细介绍）蛋白的位置限制文件posre.itp
(10)最后要注意一点：很多用户认为.gro文件是必须的。其实不然。GROMACS可以处理很多格式的文件，只不过.gro是默认的坐标文件格式。.gro文件非常紧凑，但精度不够高。如果你想用PDB等其他格式的文件，只需要指定.pdb后缀的输出文件名即可。pdb2gmx的目的是生成符合力场的拓扑文件；输出结构在很大程度上是此目的的副产品，目的是为了方便用户。具体格式几乎可以是任何你喜欢的格式（不同的格式可以在GROMACS手册中查看）。
2.建立盒子
gmx editconf -f ${pdbid}_processed.gro -o ${pdbid}_newbox.gro -bt dodecahedron -d 1.0
(1)-d决定了盒子的尺寸，即盒子边缘距离分子边缘 1.0nm （1.0Å）。理论上在绝大多数系统中，-d 都不能小于0.85nm。
(2)注：editconf 也可以用来进行gromacs文件（.gro）和pdb 文件（.pdb）的相互转化。
例如：gmx editconf –f file.gro –o file.pdb 则将file.gro 转换为 file.pdb
(3)现在就可以用产生的文件进行真空模拟了。真空模拟就是先能量最小化，然后进行动态模拟。
没用过下面图片中的命令
(4)-c会将蛋白质放在盒子的中心，而且蛋白质离盒子边缘至少1.0 nm（-d 1.0）。盒子的类型定义为立方型（-bt cubic）。距离盒子边缘的距离是一个非常重用的参数。由于需要使用周期性边界条件，我们必须满足最低镜像约定（minimum image convention）。也就是说，蛋白质不能与它的周期性镜像相遇，否则此时计算得到的力是不正确的。定义溶质-盒子的距离为1.0 nm就意味着蛋白质的两个周期性镜像之间至少有2.0 nm。这个距离可以满足模拟中几乎所有的截断方法（cutoff scheme）。
(5)看看editconf的输出, 注意体积的变化. 另外, 也看看protein-PBC.gro文件的最后一行(提示: 可使用命令tail -n 1 protein-PBC.gro). 在GROMACS格式(.gro)中, 最后一行指定单位晶胞的形状, 并总是使用三斜矩阵的表示方法, 其中前面的三个数字指定对角元素(xx, yy, zz), 后面的六个数字指定非对角元素(xy, xz, yx, yz, zx, zy).
gmx solvate -cp ${pdbid}_newbox.gro -cs spc216.gro -p topol.top -o ${pdbid}_solvate.gro
(1)通过solvate模块填充水分子（之间的版本是genbox）
(2)“我强烈建议使用十二面体（rhombic dodecahedron），因为它的体积大概是立方盒子的71%。因此，在溶剂蛋白质时可以减少大量水分子。”
(3)使用spc216.gro，这是一个通用的平衡过的3粒子溶剂模型
(4)spc216.gro可以适用于SPC、SPC/E或者TIP3P水模型，因为他们都是3粒子溶剂模型
(5)solvate模块可以追踪添加了多少水分子，然后写入到拓扑文件中以反映做出的改变。注意，如果使用的是其他非水溶剂，solvate不能自动更改拓扑文件！它与更新水分子的兼容性在代码中是固定写死的。
4.设置能量最小化
em.mdp文件：Gromacs用*.mdp 文件指定所有计算的参数。
title–标题随便取（最长64个字，简单点好） cpp–指定预处理器的位置define–传递给预处理器的一些定义。 –DFLEXIBLE告诉grompp将spc水模型而非刚性SPC包含进拓扑文件， 以便用最陡下降法进一步最小化能量。constraints–设置模型约束 integrator– steep，告诉gompp使用最速下降法进行能量最小化。 cg则代表使用共轭梯度法。dt–能量最小化用不用。只在动力学模拟中用（如md）。 nsteps–在能量最小化中，指定最大运行步数。 nstlist–更新邻居列表的频率。 nstlist = 10表示每10步更新一次。 rlist–短程邻居列表的阈值。 coulombtype–告诉gromacs如何计算静电。 PME为particle mesh ewald法（参见Gromacs用户手册） rcoulomb–指定库仑力阈值vdwtype–告诉Gromacs如何计算范德华作用(cut-off, Shift等） rvdw–指定LJ或Buckingham势能距离阈值 EM Stuff emtol–最大的力如果小于此值则能量最小化收敛（结束）（单位kJ mol–1 nm–1） emstep–初始步长（nm）
5.用grompp程序进行文件处理
gmx grompp -f em.mdp -c ${pdbid}_solvate.gro -p topol.top -o next.tpr -maxwarn 1
(1)-f标签指定输入参数文件（.mdp）
(2)-c输入结构文件（pdb文件，.pdb）
(3)-p输入拓扑文件
(4)-o输出mdrun的输入文件（*.tpr）
(5)topol.top拓扑文件内容：参考GROMACS教程1：Lysozyme
nr：原子序号type：残基序号 residue：残基名称（注意PDB文件中残基名称是“LYS”；.rtp文件中的“LYSH”表明残基被质子化） atom：原子名称 cgnr：电荷分组序号（charge group定义了整数电荷的单元，对加速计算有利） charge：原子电荷（“qtot”是分子上电荷的总和） mass：原子质量typeB、chargeB、massB：用于计算自由能微扰
; Include forcefield parameters
#include "charmm27.ff/forcefield.itp"[ moleculetype ]
; Name nrexcl
Protein_chain_A 3[ atoms ]
; nr type resnr residue atom cgnr charge mass typeB chargeB massB
; residue 1 GLY rtp GLY q +1.01 NH3 1 GLY N 1 -0.3 14.0072 HC 1 GLY H1 2 0.33 1.0083 HC 1 GLY H2 3 0.33 1.0084 HC 1 GLY H3 4 0.33 1.0085 CT2 1 GLY CA 5 0.13 12.0116 HB 1 GLY HA1 6 0.09 1.0087 HB 1 GLY HA2 7 0.09 1.0088 C 1 GLY C 8 0.51 12.0119 O 1 GLY O 9 -0.51 15.999 ; qtot (6)grompp的作用是运行坐标文件和拓扑文件，生成原子级别的输入文件（.tpr）。.tpr文件包含了体系中所有原子的参数。
(7)为了通过grompp生成.tpr文件，这里需要一个额外的.mdp输入文件（molecular dynamics parameter，检查mdp）；grompp会收集.mdp文件中的坐标和拓扑信息来生成.tpr文件。6.使用genion和tpr文件添加离子
gmx genion -s next.tpr -o ${pdbid}_solv_ions.gro -p topol.top -pname NA -nname CL -neutral
(1)对生成的tpr文件加入补偿离子以中和系统中的净电荷。
(2)-nname指定阴离子名称（在Gromos G43a1力场中，用CL-表示氯离子。参见ions.itp查看wrt力场中离子详细信息）
(3)-nn是指定加入的阴离子数目
(4)-g输出genion的log文件
(5)运行这个命令时，提示提供一个连续的溶剂组，应该是组12（SOL）。输入12，回车。程序会告知你有两个溶剂分子被氯离子代替
(6)添加离子的工具是genion模块。该模块会通读拓扑文件并以用户指定的离子代替水分子。
(7)输入文件即所谓的运行文件（run input file），文件后缀为.tpr；这个文件是通过grompp模块生成的，在后面运行第一次模拟的时候还会用到这个模块。
(8)在genion命令中，需要提供结构/状态文件(-s)作为输入文件，生成输出文件.gro (-o)，处理拓扑文件(-p)反映替换掉的水分子和添加的离子，定义正负离子的名字（-pname和-nname），然后告诉genion添加中和体系电荷的正/负离子以及离子个数
(9)可以通过指定-neutral和-conc让genion添加固定浓度的离子而不是单单中和体系。可以参考genion的主页查看相关信息。-conc 0.15 浓度为0.15 M
(10)在之前的GROMACS版本中通过-pname和-nname指定的离子是力场规定的，但在4.5版本中则进行了标准化。规定的离子名称通常是大写的元素符号，并在[ molecules ]中命名然后写到拓扑文件中。根据不同的力场，残基名或者原子名可能带有+/-号，也可能不带。在genion命令中不要用原子或者残基名，否则在接下来的步骤中会遇到很多错误。
7.在进行动力学模拟之前，我们必须保证体系没有空间上的冲突或者不合理的构象。体系结构松弛是通过所谓的能量最小化（EM）实现的。
8.EM的过程与添加离子类似。我们再次利用grompp把体系结构、拓扑文件以及模拟参数集合到.tpr文件中，但是这次不是把.tpr文件传递给genion，而是通过mdrun运行能量最小化。
9.在运行genbox和genion时确保你已经更新了topol.top文件，否则会出现一大堆错误信息（"number of coordinates in coordinate file does not match topology,“等）。
10.-v是给没有耐心等待的人设计的：它会让mdrun的输出变得冗长，每一步都会把过程输出到屏幕上。-deffnm用来定义输入和输出文件的名字。所以，如果你没有命名grompp输出文件"em.tpr”，你必须使用mdrun -s精确指定文件名。在本例中，我们会得到如下文件：
em.log：EM过程的ASCII码log文件
em.edr：二进制的能量文件
em.trr：二进制的全精度坐标文件
em.gro：能力最小化之后的结构
11.第一个是势能（potential energy，EM进程最后会输出）。Epot应该是负的，而且对于一个水中的简单的蛋白质体系来说处于105-106范围???，具体数值依赖于体系大小和水分子数目。第二个重要特征是最大作用力Fmax，收敛值是在minim.mdp中设置的——“emtol=1000.0”，意思是目标Fmax的值要低于1000KJ/(mol nm)。有时Fmax>emtol时Epot也可能处于合理范围，但是此时体系并没有完全稳定。此时应该评估为什么会出现这个现象，试着改变最小化参数（integrator、emstep等）。
这篇关于gromacs学习及使用(2)的文章就介绍到这儿，希望我们推荐的文章对编程师们有所帮助！
